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  加拿大Aurora 1500A 心肌、平滑肌細小組織測試系統

 

加拿大Aurora 1500A

心肌、平滑肌細小組織測試系統

產品簡介:

  1500A 是一款高度集成和一站式的測試系統,其設計理念是提供一個簡要的方法讓研究者去控制和測量細小組織和肌肉的力學性能,在高可信度和可再現的基礎下準確地測量細小組織的各種力學關系和參數,例如:長度-張力,力-收縮速率,功環和硬度等。

Aurora 1500A心肌、平滑肌細小組織測試系統技術特征:

 完整的測試系統且配有針對細小組織的可控溫浴槽平臺裝置

 高速的數據采集和分析軟件: 用於Windows Linux 操作系統,能夠測量和控制力度與長度

√與標準顯微鏡和倒置顯微鏡兼容使用,可配置我們的肌小節間隔長度檢測軟件

√測量的力值峰度:0.5mN1000Mn,分辨率達至0.01μN

     Description: WX20180531-113852.png

   1500A心肌、平滑肌細小組織測試系統讓研究者能夠在高可信度和可再現的基礎下準確地測量細小組織的各種力學關系和參數,例如:長度-張力,力-收縮速率,功環和硬度。給予無限制的配置調整空間,三種不同組裝具多功能性,能夠精準地測量一些細小組織的力度和長度。每個組合的實驗平臺裝置內置配有微米級XYZ位置調節器去調整我們400A系列的力傳感器,322C高速長度操控儀和300C雙模傳感器的位置。

技術原理:

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     通過把肌肉或組織透過浴槽邊上獨特的狹縫與力傳感器的懸臂進行連結,加上使用適當的上蓋置於浴槽頂部,整體設計便成為應用於人工肌肉結構物或耗氧實驗的理想裝置耗氧實驗需要封閉的環境。在系統運作下,樣本的力度或長度都能夠被測量或控制,從簡單的張力到其他比較復雜的力學性能都可以測量出來。信號采集和數據管理可以通過軟件和標準化方案之間的配合去完成,把復雜的實驗轉化成簡單和直接的測量。此外,系統亦提供一個金屬底座讓測試平臺裝置可安放在其上,方便存放,同時也令平臺裝置在底座和(立體或倒置)顯微鏡之間的移動更加安全和方便。

 

 

應用領域:

ü  肌肉生理學家

ü  運動科學家

ü  代謝&心血管學家

ü  生物工程&生物學

ü  基因學家

ü  神經科學家

ü  藥理&生化學家

ü  比較生物學家

ü  老年學家

ü  涉及研究肌肉功能

 

應用案例

挑戰:

2008年,威斯康星大學的Carter Ralphe博士試圖在氧氣密封的環境中測量組織結構中的力和收縮性。沒有時間開發定制解決方案,Ralphe博士尋求設備供應商的幫助。不幸的是,他浪費了大量時間和金錢試圖從其他制造商那里沒有工作的設備。盡管另一家制造商最終退還了錢,但花費更多的時間和精力讓他們同意收回他們的產品。

解決方案:

Ralphe博士向Aurora Scientific咨詢了定制氧氣密封蓋的設計,該密封蓋將與我們的801C的改進版本一起使用。重新設計使該裝置可以在氧氣消耗模式或常規浴池配置下運行。定制室還可以輕松整合Aurora Scientific業界領先的400系列傳感器,這些傳感器具有測試小巧精致結構所需的靈敏度。

結果:

借助這種儀器,Ralphe博士能夠成功完成他的實驗并繼續發布有影響力的結果。他現在有兩個單位,擴大了他的研究能力。Ralphe博士還向其他研究人員推薦了這種裝置,他們本身已經發布了。801C-300自此成為標準修改,并成為我們的1500A系列小型完好肌肉測試系統的一部分。

 

1500A規格參數:

322C-I 高速長度控制儀

400A 快速反應和高分辨率的力傳感器

600A 全套數據采集和數控系統

801C 細小組織測試平臺裝置

 

文獻列表

Norden, Diana M. et al. “Tumor growth increases neuroinflammation, fatigue and depressive-like behavior prior to alterations in muscle function.” Brain, Behavior, and Immunity 43 (2015): 76-85.

Tangney, Jared R. et al. “Timing and magnitude of systolic stretch affect myofilament activation and mechanical work.” American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology 307.3 (2014): H353-H360.

Gharanei, Mayel. “Investigation into the cardiotoxic effects of doxorubicin on contractile function and the protection afforded by cyclosporin A using the work-loop assay.” Toxicology in Vitro 28 (2014): 722-731.

Zuo, Li et al. “Low Po2 conditions induce reactive oxygen species formation during contractions in single skeletal muscle fibers.” American Journal of Physiology-Regulatory, Integrative and Comparative Physiology 304.11 (2013): R1009-R1016.

de Lange, Willem J. et al. “Ablation of cardiac myosin-binding protein-C accelerates contractile kinetics in engineered cardiac tissue.” Journal of General Physiology 141.1 (2013): 73-84.

Tangney, Jared R. “Effects of alterations in sarcomere structure and prestretch timing on cardiac muscle mechanics.” MSc Thesis. University of California San Diego (2012): 1-120.

Zuo, Li, Leonardo Nogueira, and Michael C. Hogan. “Reactive oxygen species formation during tetanic contractions in single isolated Xenopus myofibers.” Journal of Applied Physiology 111.3 (2011): 898-904.

Rhim, Caroline et al. “Effect of MicroRNA Modulation on Bioartificial Muscle Function.” Tissue Engineering: Part A 16.12 (2010): 3589-3597.

 

國內部分用戶名單

 

 

 

 

 


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